Concentración y tiempo máximo de exposición de juveniles de pargo manchado Lutjanus guttatus al eugenol Syzygium aromaticum

  • Jonathan Chacón-Guzmán Programa Parque Marino del Pacífico, Escuela de Ciencias Biológicas, Universidad Nacional, Puntarenas, Costa Rica. , Programa de Acuicultura y Biotecnología Marina, Parque Marino del Pacífico, Puntarenas, Costa Rica
  • Milagro Carvajal-Oses Programa Parque Marino del Pacífico, Escuela de Ciencias Biológicas, Universidad Nacional, Puntarenas, Costa Rica. , Programa de Acuicultura y Biotecnología Marina, Parque Marino del Pacífico, Puntarenas, Costa Rica.
  • Ángel Herrera-Ulloa Programa Parque Marino del Pacífico, Escuela de Ciencias Biológicas, Universidad Nacional, Puntarenas, Costa Rica.
  • Silvia Pauletto Universidad de Padua, Padua, Italia.
Palabras clave: Lutjanus guttatus, anestésico, eugenol, dosis eficiente, tiempo de no retorno

Resumen

Se definieron las dosis más eficientes de aceite de eugenol Syzygium aromaticum para la sedación quirúrgica en juveniles de pargo manchado (Lutjanus guttatus) y se determinó el tiempo mínimo de exposición de no retorno, como una fuente de información para contar con un rango de tiempo seguro en la manipulación del pez durante labores de rutina. En el Laboratorio de Acuicultura y Biotecnología Marina del Parque Marino del Pacífico en el Golfo de Nicoya, se seleccionaron 76 juveniles de pargo manchado, producidos en enero del 2016, con un peso promedio 21.61± 2.0 g.  Los juveniles fueron expuestos a concentraciones de eugenol 25, 100, 175 y 250 mg/L en tanques de 30 L, se vigiló los estados de inducción a la anestesia y su recuperación. Definida la dosis más eficiente, se procedió con ella a determinar el tiempo máximo de exposición; para este estudio se definieron cuatro tiempos de inducción en 4, 8, 12 y 16 min., y se establecieron 10 min., como umbral de recuperación.  Se determinó que el eugenol es eficaz para la anestesia de juveniles de pargo con temperaturas entre 24.0 y 24.8°C.  La concentración de 25 mg/L fue suficiente para la inducción parcial de los peces, apropiado para realizar actividades rutinarias menos complejas en el manejo de pargos, mientras que la concentración más eficiente fue de 100 mg/L, en tiempos de exposición no mayor a 8 minutos luego de la anestesia total.

Descargas

La descarga de datos todavía no está disponible.

Citas

Anderson, W., McKinley, R. & Colavecchia, M. (1997). The use of clove oil as an anaesthetic for rainbow trout and its effects on swimming performance. N. Am. J. Fish. Manage., 17, 301-307. https://doi.org/10.1577/1548-8675(1997)017<0301:TUOCOA>2.3.CO;2
Abdo-de la Parra, M., Rodríguez-Ibarra, L., Rodríguez-Montes de Oca, G., Velasco-Blanco, G. & Ibarra-Castro, L. (2015). Estado actual de la larvicultura del pargo flamenco (Lutjanus guttatus). Lat Am. J. Aquat. Res., 43(3), 415-423.
Barata, M., Soares, F., Aragao, C., Almeida, A., Pousão-Ferreira, P. & Ribeiro, L. (2016). Efficiency of 2-phenoxyethanol and Clove Oil for Reducing Handling Stress in Reared Meagre, Argyrosomus regius (Pisces: Sciaenidae). J. World Aquacult. Soc., 47(1), 82-92. https://doi.org/10.1111/jwas.12245
Barrantes-Elizondo, A., Álvarez-Corrales, J., Otárola-Fallas, A. & Ramírez-Mixter, O. (2016). Análisis de la situación actual del sector acuícola en Costa Rica. San José, Costa Rica: Organización de las Naciones Unidas para la Alimentación y la Agricultura.
Cárdenas, C., Toni, C., Martos‐Sitcha, J., Cárdenas, S., Heras, V., Baldisserotto, B., Heinzmann, B., Vázquez, R. & Mancera, J. M. (2016). Effects of clove oil, essential oil of Lippia alba and 2‐phe anaesthesia on juvenile meagre, Argyrosomus regius (Asso, 1801). J. Appl. Ichthyol., 32(4), 693-700. https://doi.org/10.1111/jai.13048
Chacón-Guzmán J. (2010). Efectos de la tecnología de cultivo del pargo manchado Lutjanus guttatus (Steindachner, 1869) en jaulas flotantes en el Golfo de Nicoya, Costa Rica. Tesis de maestría no publicada, Universidad Nacional, Heredia, Costa Rica.
Cho, G. K. & Heath, D. D. (2000). Comparison of tricaine methanesulphonate (MS222) and clove oil anaesthesia effects on the physiology of juvenile Chinook salmon Oncorhynchus tshawytscha (Walbaum). Aquac. Res., 31, 537,546. https://doi.org/10.1046/j.1365-2109.2000.00478.x
Cooke, S. J., Suski, C. D., Ostrand, K. G., Tufts, B. L. & Wahl, D. H. (2004). Behavioural and physiological assesment of low concentrations of clove oil anaesthetic for handling and transporting largemouth bass (Micropterus salmoides). Aquaculture, 239, 509-529. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2004.06.028
Coyle, S., Durborow, R. & Tidwell, J. (2004). Anesthetics in aquaculture. Texas, EE. UU.: Southern Regional Aquaculture Center.
Cunha, F. & Rosa, I. (2006). Anaesthetic effects of clove oil on seven species of tropical reef teleosts. J. Fish. Biol., 69, 1504-1512. https://doi.org/10.1111/j.1095-8649.2006.01213.x
Cup, A. R., Hartleb, C., F., Fredricks, K. & Gaikowski, M. P. (2014). Effectiveness of eugenol sedation to reduce the metabolic rates of cool and warm water fish al high loading densities. Aquacult. Res., 47(1), 234-242. https://doi.org/10.1111/are.12485
Din, A. (2006). Molluscicidal effect of three monoterpenes oils on schistosomiasis and fascioliasis vector snails. J. Egypt. Soc. Parasitol., 36(2), 599-612.
Di Rienzo J. A., Casanoves F., Balzarini M. G., Gonzalez L., Tablada M. & Robledo C. W. (2008). InfoStat. Buenos Aires, Argentina. Grupo InfoStat, FCA.
Fischer, W., Krupp, F., Schneider, W., Sommer, C., Carpenter, K. E. & Niem, V. H. (1995). Guía FAO para la identificación de especies para los fines de la pesca. Roma, Italia: Organización de las Naciones Unidas para la Alimentación.
García-Gómez, A., De la Gándara, F. & Raja, T. (2002). Utilización del aceite de clavo, Syzygium aromaticum L. (Merr. & Perry), como anestésico eficaz y económico para labores rutinarias de manipulación de peces marinos cultivados. Bol. Inst. Español Oceanogr., 18(1-4), 21-23.
González-Escobar, R. (2002). Eugenol: propiedades farmacológicas y toxicológicas. Ventajas y desventajas de su uso. Rev. Cubana. Estomatol., 39(2), 139-156.
Grush, J., Noakes, D. & Morcia, R. (2004). The efficacy of clove oil as an anesthetic for the zebrafish, Danio rerio (Hamilton). Zebrafish, 1(1), 46-53. https://doi.org/10.1089/154585404774101671
Guénette, S., Uhland, F., Hélie, P., Beaudry, F. & Vachon, P. (2007). Pharmacokinetics of eugenol in rainbow trout (Onchorhynchus mykiss). Aquaculture, 266, 262-265. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2007.02.046
Gullian, M. & Villanueva, J. (2009). Efficacy of tricaine methanesulphonate and clove oil as anaesthetics for juvenile cobia Rachycentron canadum. Aquac. Res., 40(7), 852-860. https://doi.org/10.1111/j.1365-2109.2009.02180.x
Herrera-Ulloa, A., Chacón-Guzmán, J., Zúñiga-Calero, G., Fajardo-Espinoza, O. & Jiménez-Montealegre, R. (2009). Acuicultura de pargo la mancha Lutjanus guttatus (Steindachner, 1869) en Costa Rica dentro de un enfoque sistémico. Rev. Cien. Mar. Cost., 1, 197-213.
Hoskonen, P. & Pirhonen, J. (2004). Temperature effects on anaesthesia with clove oil in sex temperate-zone fishes. J. Fish Biol., 64, 1136-1142. https://doi.org/10.1111/j.1095-8649.2004.00359.x
Hussein, M., Wada, S., Hatai, K. & Yamamoto, A. (2000) Antimycotic activity of eugenol against selected water molds. J. Aquat. Anim. Health, 12, 224-229. https://doi.org/10.1577/1548-8667(2000)012<0224:AAOEAS>2.0.CO;2
Iversen, M., Finstand, B., Mackinley, R. & Eliassen, R. (2003). The efficacy of metomidate, clove oil, Aqui-S and Benzoak® as anaesthetics in Atlantic salmon (Salmo salar L.) smolts, and their potential stress-reducing capacity. Aquaculture, 221, 549-566. https://doi.org/10.1016/S0044-8486(03)00111-X
Javahery, S., Nekoubin, H. & Moradlu, A. (2012). Effect of anasthesia with clove oil in fish (review). Fish Physiol. Biochem., 38(6), 1545-1552. https://doi.org/10.1007/s10695-012-96825
Marín-Méndez, G., Torres-Cortés, A., Naranjo-Suarez, L., Chacón-Novoa, R. & Rondón-Barragan, L. (2012). Concentración letal 50 a 96 horas de eugenol en cachama blanca (Piaractus brachyopomus). Orinoquia, 16(2), 62-66.
Millán-Ocampo, L., Torres-Cortés, A., Marín-Méndez, G. A., Ramírez-Duart, W., Vásquez-Piñeros, M. A. & Rondón-Barragán, I. (2012). Concentración anestésica del eugenol en peces escalares (Pterophyllum scalare). Rev. Investig. Vet. Peru, 23(2), 171-181.
Mylonas, C. C., Cardinaletti, G., Sigelaki, I. & Polzonetti-Magni, A. (2005). Comparative efficacy of clove oil and 2-phenoxyethanol as anesthetics in the aquaculture of European sea bass (Dicentrarchus labrax) and gilthead sea bream (Sparus aurata) at different temperatures. Aquaculture, 246(1-4), 467-481. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2005.02.046
Oliveira, L., Branco, R., Luscher, A., Lira, A., Rocha, T. & Santos, G. (2008). Eugenol como anestésico para a tilapia-do-nilo. Pesq. Agropec. Bras., 43, 1069-1074. http://dx.doi.org/10.1590/S0100-204X2008000800017
Park, I., Lee, S., Kim, Y., Park, K., Hur, J., Yoo, J. & Song, Y. (2003). Anesthetic effect of lidocaine hydrochloridesodium bicarbonate and MS-222 on the greenling (Hexagrammos otakii). J. Korean Fish. Soc., 39(8), 449-453. http://dx.doi.org/10.5657/kfas.2003.36.5.449.
Park, M., Hur, W., Im, S., Seol, D., Lee, J. & Park, I. (2008). Anaesthetic efficacy and physiological responses to clove oil anaesthetized kelp grouper Epinephelus bruneus. Aquat. Res., 39, 877-884. https://doi.org/10.1111/j.1365-2109.2008.01941.x
Perry, S. & Gilmour, K. (2006) Acid-base balance and CO2 excretion in fish: unanswered questions and emerging models. Resp. Physiol. Neuro., 154, 199-215. https://doi.org/10.1016/j.resp.2006.04.010
Portz, D., Woodley, C. & Cech, C. (2006) Stress-associated impacts of short-term holding on fishes. Rev. Fish. Biol. Fish , 16, 125-170. https://doi.org/10.1007/s11160-006-9012-z
Prashar, A., Locke, I. C. & Evans, C. S. (2006). Cytotoxicity of clove (Syzygium aromaticum) oil and its major components to human skin cells. Cell Proliferation, 39(4), 241-248. https://doi:10.1111/j.1365-2184.2006.00384.x
Prince, A. & Powell, C. (2000). Clove oil as an anesthetic for invasive field procedures on adult rainbow trout. North Am. J. Fish. Manage., 20, 1029-1032. https://doi.org/10.1577/1548-8675(2000)020<1029:COAAAF>2.0.CO;2
Roo, J., Fernández‐Palacios, H., Hernández‐Cruz, C. M., Mesa‐Rodriguez, A., Schuchardt, D. & Izquierdo, M. (2014). First results of spawning and larval rearing of longfin yellowtail Seriola rivoliana as a fast‐growing candidate for European marine finfish aquaculture diversification. Aquat. Res., 45(4), 689-700. https://doi.org/10.1111/are.12007
Roubach, R., Gomes, L.C. & Val, A.L. (2001). Safest level of tricaine mehanesulfonate (MS-222) to induce anesthesia in juveniles matrinx, Brycon cephalus. Acta Amazon, 31, 159-163. http://dx.doi.org/10.1590/1809-43922001311163
Roubach, R., Gómez, L., Fonseca, F. & Val, A. (2005). Eugenol as na efficacious anaesthetic for tambaqui, Colossoma macropomum (Cuvier). Aquat. Res., 36(11), 1056-1061. https://doi.org/10.1111/j.1365-2109.2005.01319.x
Sladky, K. K., Swanson, C. R., Stoskopf, M. K., Loomis, M. R. & Lewbart, G. A. (2001). Comparative efficacy of tricaine methanesulfonate and clove oil for use as anesthetic in red pacu (Piaractus brachypomus). Am. J. Vet. Res., 62, 337-342. https://doi.org/10.2460/ajvr.2001.62.337
Small, B. (2003). Anesthetic efficacy of metomidate and comparison of plasma cortisol responses to tricaine methanesulfonate, quinaldine and clove oil anesthetized channel catfish Ictalurus punctatus. Aquaculture, 218, 177-185. https://doi.org/10.1016/S0044-8486(02)00302-2
Soto, C. & Burhanuddin, C. (1995). Clove oil as a fish anaesthetic for measuring length and weight of rabbitfish (Siganus lineatus). Aquaculture, 136, 149-152. https://doi.org/10.1016/0044-8486(95)01051-3
Souza, M., Vettorazzi, M., Kobayashi, R., Neto, F. & de Andrade, M. (2015). Eugenol as an anaesthetic in the management of farmed lane snapper, Lutjanus synagris (Linnaeus, 1758). Rev. Cien. Agron., 46(3), 532-538. http://dx.doi.org/10.5935/1806-6690.20150035
Steindachner, F. (1869). Ichthyologische Notizen. Sitzber. Akad., 60, 290-318.
Summerfelt, R. C. & Smith, L. S. (1990). Anaesthesia, surgery and related techniques. In C. B. Schreck & P. B. Moyle (Eds.), Methods in Fish Biology (pp. 213-272). Maryland, EE. UU.: American Fisheries Society.
Taylor, P. W. & Roberts, S. D. (1999). Clove oil: an alternative anaesthetic for aquaculture. N Am. J. Aquact., 61, 150-155.
UFR (Use of Fishes in Research) Committee. (2013). Guidelines for the use of fishes in research. Bethesda, Maryland: American Fisheries Society.
Velísek, J., Wlasow, T., Gomulka, P., Svobodová, Z., Novotn, L. & Ziomek, E. (2006). Effects of clove oil anaesthesia on European Catfish (Silurus glanis L.). Acta Veterinaria Brno., 75, 99-106. https://doi.org/10.2754/avb200675010099
Walsh, C. T. & Pease, B. C. (2002). The use of clove oil as an anaesthetic for the longfinned eel, Anguilla reinhardtii (Steindachner). Aquat. Res., 33, 627-635. https://doi.org/10.1046/j.1365-2109.2002.00701.x
Webber, R. A., Peleteiro, J., García-Martín, L. & Aldegunde, M. (2009). The efficacy of 2-phenoxyethanol, metomidate, clove oil and MS-222 as anaesthetic agents in the Senegalese sole (Solea senegalensis Kaup 1858). Aquaculture, 288, 147-150. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2008.11.024
Woody, C. A., Nelson, J. & Ramstad, K. (2002). Clove oil as an anaesthetic for adult sockeye salmon: field trials. J. Fish. Biol., 60, 340-347. https://doi.org/10.1111/j.1095-8649.2002.tb00284.x
Zahl, I. H., Samuelsen, O. & Kiessling, A. (2012). Anaesthesia of farmed fish: implications for welfare. Fish. Physiol. Biochem., 38, 201-218. https://doi.org/10.1007/s10695-011-9565-1
Publicado
2019-03-06
Cómo citar
Chacón-Guzmán, J., Carvajal-Oses, M., Herrera-Ulloa, Ángel, & Pauletto, S. (2019). Concentración y tiempo máximo de exposición de juveniles de pargo manchado Lutjanus guttatus al eugenol Syzygium aromaticum. Revista Ciencias Marinas Y Costeras, 11(1), 9-25. https://doi.org/10.15359/revmar.11-1.1
Sección
Artigos (seção Arbitrada)