Capacidade antioxidante de bactérias ácido láticas isoladas de peixes e invertebrados marinhos da província de Chubut, Patagônia-Argentina
DOI:
https://doi.org/10.15359/revmar.15-1.6Palavras-chave:
Atividade antioxidante, alimentos funcionais, Enterococcus, Lactococcus, ambiente marinhoResumo
A atividade antioxidante de bactérias ácido láticas (BAL) tem sido extensivamente estudada em cepas isoladas de organismos terrestres, alimentos fermentados e não processados. No entanto, esta informação sobre isolamentos de origem marinha ainda está sendo determinada. Tal característica é de particular interesse, devido ao seu potencial uso em alimentos funcionais. Neste trabalho, a capacidade antioxidante de 16 BAL bacteriocinogênicas de organismos marinhos da costa de Chubut (período 2010-2022) foi estudada através de ensaios in vitro e in vivo. A capacidade antioxidante in vitro foi avaliada pela redução de 2,2-difenil-1-picrilhidrazil (DPPH), atividade antioxidante redutora de íons cúpricos (CUPRAC) e eliminação de radicais hidroxila, usando células não lisadas. A Saccharomyces cerevisiae foi usado como modelo biológico eucariótico para avaliar o efeito protetor in vivo. Os resultados obtidos pelo sequestro dos radicais DPPH mostraram valores entre 15-37.5%; o ensaio de sequestro de radicais hidroxila apresentou valores entre 13.3-61.9% e o método CUPRAC os valores variaram entre 0.223-0.551, equivalente a mmol de ácido ascórbico por ml de suspensão celular. O efeito protetor do BAL na sobrevivência de S. cerevisiae apresentou valores entre 36-90%. Não foi possível estabelecer relações entre os valores obtidos por diferentes métodos ou entre membros do mesmo gênero ou espécie; portanto, a capacidade antioxidante pode ser considerada uma característica dependente da cepa. Os resultados sugerem que a capacidade antioxidante de BAL bacteriocinogênica de origem marinha pode ser utilizada como uma característica de seleção metabólica com potencial biotecnológico no desenvolvimento de alimentos funcionais.
Referências
Annuziata, A. & Vecchio, R. (2013). Consumer perception of functional foods: A conjoint analysis with probiotics. Food Qual. Prefer., 28(1), 348-355. https://doi.org/https://doi.org/10.1016/j.foodqual.2012.10.009
Apak, R., Güçlü, K., Özyürek, M. & Karademir, S. E. (2004). Novel total antioxidant capacity index for dietary polyphenols and vitamins C and E, using their cupric ion reducing capability in the presence of neocuproine: CUPRAC Method. J. Agric. Food Chem., 52, 7970-7981. https://doi.org/10.1021/jf048741x
Bhagwat, A. & Annapure, U. S. (2019). In vitro assessment of metabolic profile of Enterococcus strains of human origin. J. Genet. Eng. Biotechnol., 17(11), 1-11. https://doi.org/https://doi.org/10.1186/s43141-019-0009-0
Dionisi, H., Lozada, M. & Olivera, N. (2012). Bioprospection of marine microorganisms biotechnological applications and methods. Rev. Argent. Microbiol., 44, 49-60.
Feng, J., Cai, Z., Chen, Y., Zhu, H., Chang, X., Wang, X. & Nie, G. (2020). Effects of an exopolysaccharide from Lactococcus lactis Z-2 on innate immune response, antioxidant activity, and disease resistance against Aeromonas hydrophila in Cyprinus carpio L. Fish Shellfish Immunol., 98, 324-333. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2020.01.037
Gianni de Carvalho, K., Gómez, J., Vallejo, M., Marguet, E., Peroti, N., Donato, M., … & Colin, V. (2019). Production and properties of a bioemulsifier obtained from a lactic acid bacterium. Ecotoxicol. Environ. Saf., 183, 1-8. https://doi.org/10.1016/j.ecoenv.2019.109553
Granato, D., Barba, F., Bursać-kovačević, D., Lorenzo, J., Cruz, A. & Putnik, P. (2020). Annual Review of Food Science and Technology Functional Foods: Product Development, Technological Trends, Efficacy Testing, and Safety. Annu Rev Food Sci Technol, 11(3), 93-118. https://doi.org/10.1146/annurev-food-032519-051708
Kim, S., Jeon, H., Han, H. & Hur, J. (2021). Evaluation of Bacillus albus SMH-1 and B. safensis SMG-2 isolated from Saemangeum Lake as probiotics for aquaculture of white shrimp (Litopenaeus vannamei). Aquac. Rep., 20, 1-9. https://doi.org/10.1016/j.aqrep.2021.100743
Kuda, T., Kawahara, M., Nemoto, M., Takahashi, H. & Kimura, B. (2014). In vitro antioxidant and anti-inflammation properties of lactic acid bacteria isolated from fish intestines and fermented fish from the Sanriku Satoumi region in Japan. Food Res. Int., 64, 248-255. https://doi.org/10.1016/j.foodres.2014.06.028
Lara, V., Vallejo, M., Parada, R., Henao Ossa, J., Gliemmo, M. & Campos, C. (2020). Characterization of the emulsifying activity of biosurfactants produced by lactic acid bacteria isolated from the Argentinian Patagonia. J. Dispers. Sci. Technol., 46(6), 902-909. https://doi.org/10.1080/01932691.2020.1845961
Łepecka, A., Szymański, P., Okoń, A., Zielińska, D. (2023). Antioxidant activity of environmental lactic acid bacteria strains isolated from organic raw fermented meat products. LWT - Food Sci. Technol., 174, 1-7. https://doi.org/10.1016/j.lwt.2023.114440
Lin, X., Xia, Y., Wang, G., Yang, Y., Xiong, Z., Lv, F. & Ai, L. (2018). Lactic acid bacteria with antioxidant activities alleviating oxidized oil induced hepatic injury in mice. Front. Microbiol., 9, 1-10. https://doi.org/10.3389/fmicb.2018.02684
Marguet, E., Vallejo, M., Chichisola, V. & Quispe, J. (2011). Actividad antagonista de bacterias lácticas aisladas del medio marino contra cepas de Listeria. Acta Bioquim. Clin. Latinoam., 45(2), 305-310.
Mrvčić, J., Stanzer, D., Šolić, E. & Stehlik-Tomas, V. (2012). Interaction of lactic acid bacteria with metal ions: Opportunities for improving food safety and quality. World J. Microbiol. Biotechnol., 28(9), 2771-2782. https://doi.org/10.1007/s11274-012-1094-2
Mu, G., Li, H., Tuo, Y., Gao, Y. & Zhang, Y. (2019). Antioxidative effect of Lactobacillus plantarum Y44 on 2,2′-azobis(2-methylpropionamidine) dihydrochloride (ABAP)-damaged Caco-2 cells. J. Dairy Sci., 102(8), 6863-6875. https://doi.org/10.3168/jds.2019-16447
Özyürek, M., Güçlü, K. & Apak, R. (2011). The main and modified CUPRAC methods of antioxidant measurement. Trends Analyt. Chem., 30(4), 652-664. https://doi.org/10.1016/j.trac.2010.11.016
Rezaei, M., Noori, N., Shariatifar, N., Gandomi, H., Akhondzadeh Basti, A. & Mousavi Khaneghah, A. (2020). Isolation of lactic acid probiotic strains from Iranian camel milk. Food Sci. Technol., 132, 1-8. https://doi.org/10.1016/j.lwt.2020.109823
Schelegueda, L. I., Vallejo, M., Gliemmo, M. F., Marguet, E. R. & Campos, C. A. (2015). Synergistic antimicrobial action and potential application for fish preservation of a bacteriocin produced by Enterococcus mundtii isolated from Odontesthes platensis. LWT - Food Sci. Technol., 64, 794-801. https://doi.org/10.1016/j.lwt.2015.06.017
Sequeiros, C., Vallejo, M., Marguet, E. R. & Olivera, N. L. (2010). Inhibitory activity against the fish pathogen Lactococcus lactis TW34, a lactic acid bacterium isolated from the intestinal tract of a Patagonian fish. Arch. Microbiol., 192, 237-245. https://doi.org/10.1007/s00203-010-0552-1
Shahidi, F. & Zhong, Y. (2015). Measurement of antioxidant activity. J. Funct. Foods, 18, 757-781. https://doi.org/10.1016/j.jff.2015.01.047
Sosa, F. M., Parada, R. B., Marguet, E. R. & Vallejo, M. (2022). Utilization of agro-industrial byproducts for bacteriocin production using Enterococcus spp. strains isolated from patagonian marine invertebrates. Curr. Microbiol., 79, 1-12. https://doi.org/10.1007/s00284-021-02712-5
StatPoint Technologies, Inc. (2006). Statgraphics centurion XV user manual. The Plains, VA: StatPoint Technologies, Inc. https://www.statgraphics.com/
Vallejo, M., Olivera, N., Sequeiros, C. & Marguet, E. (2009). Actividad antilisteria de bacterias ácido lácticas aisladas de peces marinos. Analect. Vet., 29(2), 19-23.
Wen, X., Wu, J., Wang, F., Liu, B., Huang, C. & Wei, Y. (2013). Deconvoluting the role of reactive oxygen species and autophagy in human diseases. Free Radic. Biol. Med., 65, 402-410. https://doi.org/10.1016/j.freeradbiomed.2013.07.013
Zhang, L., Liu, C., Li, D., Zhao, Y., Zeng, X., Yang, Z.& Li, S. (2013). Antioxidant activity of an exopolysaccharide isolated from Lactobacillus plantarum C88. Int. J. Biol. Macromol., 54, 270-275. https://doi.org/10.1016/j.ijbiomac.2012.12.037
Zhang, Y., Chen, X., Hu, P., Liao, Q., Luo, Y., Li, J., Feng, D., … & Xu, H. (2021). Extraction, purification, and antioxidant activity of exopolysaccharides produced by Lactobacillus kimchi SR8 from sour meat in vitro and in vivo. Cy T A - J. Food, 19(1), 228-237. https://doi.org/10.1080/19476337.2021.1883117
Downloads
Publicado
Como Citar
Edição
Seção
Licença
Condições gerais
Revista Ciencias Marinas y Costeras por Universidad Nacionalestá sob uma licencia de Creative Commons Reconocimiento-NoComercial-SinObraDerivada 3.0 Costa Rica.
A revista é hospedada em repositórios de acesso aberto, tais como o Repositorio Institucional de la Universidad Nacional, em Repositorio Kimuk de Costa Rica y la Referencia.
A fonte editorial da revista deve ser reconhecida. Use o identificador doi da publicação para este fim.
Política de auto-arquivamento: A revista permite o auto-arquivamento de artigos em sua versão revisada, editada e aprovada pelo Conselho Editorial da Revista para que eles estejam disponíveis em Acesso Aberto através da Internet. Mais informações no link a seguir: https://v2.sherpa.ac.uk/id/publication/28915
Los artículos de la Revista Ciencias Marinas y Costeras se encuentra bajo la 
